马郁兰和鼠尾草精油预防肥胖对男性生育力的影响，来自《生物多样性和生物多样性科学杂志》

例如，《生物多样性和生物多样性科学杂志》2（2015） 167E175主办方：完整文章马郁兰和鼠尾草精油通过调节饮食性肥胖阿扎·MEl-Sayed M. El-Wakf*埃曼？阿卜杜勒？加尼？埃尔哈比埃及曼苏拉大学理学院动物学系生理学系A R T I C L E I N F O文章历史记录：接收日期：2015年3月8日接收日期：2015年2015年5月8日接受2015年5月31日在线发布保留字：肥胖男性不育Aromatase精油马郁兰鼠尾草AB S T R A C T肥胖已被认为是男性不育的主要原因。本研究旨在调查肥胖引起的生殖障碍，以及通过使用马郁兰和鼠尾草油提取物的可能预防。成年雄性大鼠通过喂食高脂饮食（HFD）12周实现肥胖，同时口服马郁兰（0.16 ml/kg b.wt）和鼠尾草（0.05ml/kg b.wt）油相同的持续时间。HFD喂养的大鼠表现出明显的肥胖特征，表现为肥胖指数增加，与对照组大鼠相比体重增加更高。这与睾丸和血清中脂质积累增加有关肥胖大鼠的情况。血清瘦素、催乳素L（PRL）和雌激素（E2）水平升高，血清雄激素、脱氢表雄酮（DHEA）、睾酮（T）和T/E2比值降低。此外，结果显示，肥胖大鼠的附睾精子计数以及类固醇生成酶显著减少; 3b-羟基类固醇脱氢酶（3b-HSD）、碱性磷酸酶（ALP）和酸性磷酸酶（ACP），睾丸中芳香化酶活性显著升高。还检测到组织学改变，包括生精小管的退行性变化，伴有脱落、空泡化和生精细胞减少。马郁兰或鼠尾草油提取物与HFD一起口服给药似乎可以预防总体上提到的改变，这通过减少睾丸脂质积聚、升高雄激素和精子计数以及改善睾丸结构来证明。因此，结果表明，这两种油应考虑在未来的治疗方法控制肥胖对男性生育力的不利影响。版权所有2015年，曼苏拉大学。由Elsevier B. V.制作和托管。这是一个CC BY-NC-ND许可证下的开放获取文章（http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/）。1.介绍*通讯作者。埃及曼苏拉曼苏拉大学理学院动物学系生理学系。联系电话：电话：1001760744（手机）电子邮件地址：drazza_elwakf@yahoo.com，dr_azzael-wakf@yahoo.com（上午）El-Wakf）。由曼苏拉大学负责进行同行审查。http://dx.doi.org/10.1016/j.ejbas.2015.05.005肥胖是一个日益严重的健康问题，是许多慢性疾病的主要原因。最常见的包括心血管疾病、2型糖尿病、骨关节炎和某些类型的癌症[1]。此外，肥胖和男性不育之间的直接关系已被假定[2]。2314- 808 X/版权所有2015年，曼苏拉大学。由爱思唯尔公司制作和主持 这是一篇CC BY- NC-ND许可证下的开放获取文章（http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/）。可在www.sciencedirect.com在线获取ScienceDirect杂志主页：http://ees.elsevier.com/ejbas/default.asp168埃及生物多样性和应用科学杂志2（2015）167E175在过去的十年里，由于肥胖症的增加与男性不育症的增加同时出现的趋势，这种关系值得深入研究[3]。研究人员发现，超重和肥胖男性中少精症的患病率较高，精子数量与体重指数（BMI）之间存在显着关联[4]。肥胖男性显示出雄激素和性激素结合球蛋白（SHBG）水平降低，循环雌二醇水平升高[5]。还发现肥 胖会影响GnRH-LH/FSH脉冲 ，这可能 会损害Lyedig和Sertoli细胞功能，进而影响精子成熟[6]。近年来，天然植物用于维持健康和预防疾病的使用急剧增加其中，芳香植物的特征在于存在具有令人愉快气味的挥发性化合物，称为精油（EO）。芳香植物被特别栽培用于食品加工、调味和其他烹饪目的。然而，他们也被确定为他们的高治疗活性[7]。最熟悉的芳香植物之一是马郁兰（Origanummajorana，唇形科），特别原产于地中海地区[8]。在民间医学中，马郁兰提取物用于咳嗽，痉挛，抑郁，头晕，胃肠道疾病，偏头痛和神经性头痛[9]。此外，马郁兰已被用作镇痛剂、防腐剂、抗病毒剂、杀菌剂和泻药[10]。马郁兰或其EO似乎也能有效地增强新陈代谢和保持健康的体重[11]。鼠尾草（Salvia officinalis）是唇形科的另一种芳香植物。它通常用作食品制备中的香料和调味品，特别是在地中海美食中[12]。鼠尾草及其分离的油主要负责各种治疗效果，主要用于治疗肌肉疼痛和消化系统疾病[13]，以及促进能量消耗和脂肪氧化，这可能有助于减轻体重[12]。Sage还显示具有抗痉挛、抗抑郁和镇静活性[14]。虽然许多研究支持马郁兰和鼠尾草油提取物的药用活性，但很少有人知道它们对肥胖和相关疾病，特别是男性不育症的影响因此，本研究旨在研究给予马郁兰和鼠尾草油提取物在减少肥胖对男性生育力的负面影响方面这是通过评估生殖指数的数量来实现的，包括脂质谱、生殖激素、睾丸酶和睾丸组织的组织病理学变化根据国家研究委员会2.2.植物油马郁兰（O. majorana）油提取物得自埃及开罗的农业研究中心，而鼠尾草（S.majorana）油提取物得自埃及开罗的农业研究中心。油提取物得自美国LotusBrands发行的“NaturesAlchemy“。2.3.化学品脱氢表雄酮、NAD、甘油和牛血清白蛋白购自SigmaCompany for Chemicals，Cairo，Egypt。所有其他试剂均为分析级，购自当地供应商。2.4.实验设计适应期结束后，将大鼠随机分为7组（6只动物/每只）：第1组，在整个实验期间给大鼠喂食标准饮食;第2组，给大鼠喂食标准饮食并以1 ml/kg b.wt的剂量口服接受作为媒介物的向日葵油;第3组，给大鼠喂食标准饮食并口服接受马郁兰油（0.16 ml/kg b.wt）稀释于向日葵油（1：2）中[9];第4组，大鼠喂食标准饮食并接受鼠尾草油（0.05 ml/kg b.wt）稀释于葵花油（1：2）中[15];第5组，喂食由与融化的动物腹部脂肪混合的粉末形式的正常实验室饮食组成的HFD（30%）和超纯胆固醇（2%）[16，17];第6和7组，大鼠喂食HFD，并以与上述组相同的方式和剂量接受马郁兰和鼠尾草油所有动物每天接受各自的治疗，持续12周。在实验开始和结束时记录动物体重，以获得体重增量。2.5.血液和组织取样在实验期结束时，在乙醚麻醉下处死禁食过夜的大鼠。采集血样，以855× g离心10 min，分离血清用于进一步生化分析。采集血液后，立即取出每只大鼠的两个睾丸、附睾、输精管和精囊并称重。取右侧睾丸进行生化检测，左侧睾丸用10%中性甲醛固定，进行病理组织学检查。以内脏脂肪、附睾脂肪和腹膜后脂肪之和确定肥胖指数体重除以体重×100，表示为2.材料和方法2.1.实验动物本研究是在最初体重为170和 180 g的雄性Wister白化大鼠上进行的在实验工作前，允许大鼠食用足够的标准啮齿动物饲料（购自Meladco fed Company，Auborcity，Cairo，Egypt），并在一周的适应期内自由饮水。动物护理和实验符合“研究伦理委员会”MansouraUniversity，Egypt，肥胖率[18]。2.6.组织匀浆称取右侧睾丸的一部分，在冷蒸馏水中匀浆，并在855× g下离心10 min。上清液用于分析生化参数，3b-羟基类固醇脱氢酶（3b-HSD）除外。称取睾丸的第二部分，并在4℃下在含有5 mmol磷酸钾和1 mmol EDTA的20%光谱级甘油中均质化。所得169例如，《生物多样性和生物多样性科学杂志》2（2015） 167E175匀浆在4℃下以10，000×g离心30分钟，收集上清液用于测定3b-HSD活性[19]。2.7.生化参数2.7.1.男性荷尔蒙根 据 Tietz[20] 和 Longcope[21] 的 方 法 ， 使 用 RockDiagnostics2.10.统计分析记录的数据表示为平均值±SE。使用单因素方差分析进行统计分析，然后进行最小显著差异（LSD）检验，以确定研究组平均值之间的差异。在P0.05时认为差异具有统计学显著性[34]。<表中显著性值用不同的上标“”字母表示编号68298雌激素（E2）和催乳素（PRL）是估计的。使用Biomerieux试剂盒通过酶联荧光测定（ELFA）技术进行配对，如Dupont et al. [22]和Sapin和Simon [23]。根据Considine和Siha[24]的方法，使用市售试剂盒（DRGinstruments，德国）通过ELISA技术估计瘦素。血清T/E2比值计算为T（ng/ml）除以E2（ng/ml）[25]。2.7.2.3β-羟基类固醇脱氢酶（3β-HSD）活性将睾丸上清液（1 ml）与1 ml焦磷酸钠缓冲液（pH8.9）、40ml含有30mg脱氢表内甾酮的乙醇和960ml 25%牛血清白蛋白混合，制成3 ml的最终孵育混合物. 接着，加入100 mL 0.5mMNAD以评价3 b-HSD活性在340 nm处相对于空白（不含NAD）[19]。2.7.3.细胞色素P- 450芳香化酶活性如Roselli所述，基于夹心原理，通过固相酶联免疫吸附测定（ELISA）进行芳香酶活性的定量测量[26]。将样品在预先包被有芳香酶特异性生物素缀合抗体的微量滴定板孔中孵育。孵育后，形成夹心复合物并洗掉未结合的材料。接着，加入抗生物素蛋白过氧化物酶复合物，用于在450 nm处检测结合的芳香酶。2.7.4.其他生化参数使用埃及开罗生物诊断公司提供的试剂盒测量总脂质（TL）[27]、磷脂（PL）[28]和酸性磷酸酶（ACP）[29]总胆固醇（TC）[30]和碱性磷酸酶（ALP）[30]使用BioMed Company（开罗，埃及）提供的试剂盒进行估算，而甘油三酯（TG）[31]使用Spectrum Company（开罗）提供的试剂盒进行测量。2.8.附睾精子计数将附睾在5 ml 0.9% NaCl中匀浆使用血细胞计数器[32]进行精子计数，然后计算每克附睾的精子2.9.组织病理学检查固定后，将睾丸脱水，在二甲苯中清洁，浸润并包埋在石蜡中。使用Bancroft和Gamble的方法[33]，将包埋的组织切成5μm厚的切片，用于苏木精（H）和伊红（E）的常规染色。3.结果3.1.生化指标如表（1e3）所示，与正常大鼠相比，向正常大鼠给予马郁兰或鼠尾草EO在所有测试参数中未产生任何显著变化，连续12周高脂饮食（HFD）喂养雄性大鼠可有效促进肥胖，如肥胖指数增加和体重增加所示，但与对照组大鼠相比，性器官（睾丸、附睾、精囊和输精管）对喂食HFD的动物给予马郁兰或鼠尾草油提取物显示体重增加和肥胖指数显著降低（表1）。肥胖大鼠血清瘦素、PRL和E2水平显著升高，同时血清雄激素、DHEA、T和T/E2比值显著降低。此外，结果显示附睾精子计数显著减少，血清和睾丸TL、TC、TG和PL显著升高。然而，与HFD喂养的大鼠相比，给予HFD喂养的大鼠马郁兰或鼠尾草油显著降低了血清瘦素、PRL、E2和血清和睾丸组织中的各种脂质指数，但增加了血清T、DHEA和T/E2比值的水平，附睾精子计数升高（表2）。与对照组相比，肥胖组大鼠睾丸组织中3b-HSD、ACP和ALP活性显著降低，芳香化酶活性显著升高与HFD喂养的大鼠相比，向HFD喂养的大鼠施用马郁兰或鼠尾草油提取物显著改善了所有的过氧化物酶变化（表3）。总之，所获得的数据可以表明马郁兰和鼠尾草精油两者对抗肥胖和相关生化变化的潜在活性，然而马郁兰似乎最有效，尽管两种油之间的差异在统计学上不显著。3.2.组织病理学检查对照组的睾丸（图1）显示生精小管（ST）的正常结构组织。正常精子（SP）数量和Leydig细胞（LC）的外观也被观察到。同样，溶媒组（图2）、马郁兰组（图3）和鼠尾草组（图4）也显示出正常的睾丸结构。喂食HFD的大鼠（图5）显示生精小管发生退行性变化，包括脱落、空泡化（V）和生精细胞（SG）减少。大鼠喂食HFD并接受马郁兰170埃及生物多样性和应用科学杂志2（2015）167E175表1e对照组和不同给药组的体重增加、肥胖指数、性器官重量和附睾精子计数参数控制向日葵Marjoram动物组Sage HFDHFD马郁兰HDF-Sage体重增量（g）130.42 ±8.95121.80 ±4.0388.83 ±11.78106.57±8.73 222 ± 14.43a132.58 ±8.11b148.92 ±7.09b肥胖指数（%）6.85 ±0.776.27 ±0.505.67 ±0.296.32 ±0.4811.33 ±0.13a8.06 ±0.41b8.95 ±0.55b睾丸重量（g）1.43 ±0.041.45 ±0.021.47 ±0.021.46±0.04 1.32 ± 0.021.40 ±0.051.37 ±0.02附睾重量（g）0.50 ±0.030.52 ±0.030.51 ±0.020.50±0.03 0.47 ± 0.010.50 ±0.020.50 ±0.03精囊重量（g）0.830.0420.8 ±0.080.83 ±0.060.83±0.04 0.75 ± 0.040.82 ±0.050.82 ±0.05输精管重量（g）0.23 ±0.020.24 ±0.020.24 ±0.020.24± 0.01 0.20± 0.0090.22 ±0.020.22 ±0.02精子计数（104）/g3.82 ±0.123.97 ±0.064.12 ±0.103.85±0.12 1.74 ± 0.09a3.36 ±0.16b3.16±0.06a，b数值为平均值± SE（n 1/4 6），HFD 1/4高脂肪饮食，带有上标的数值通过ANOVA在p <0.05时具有显著差异。A：与对照组比较。b：与HFD组比较（HFD马郁兰）和（HFD鼠尾草）表2e对照组和不同给药组的激素谱以及血清和睾丸脂质参数控制向日葵Marjoram动物组Sage HFDHFD马郁兰公司简介血清睾酮4.94 ±0.204.47 ±0.185.09 ±0.274.63 0.232.49 ±0.44a4.60 ±0.18b4.17 ±0.38b(ng/ml）DHEA5.27 ±0.345.35 ±0.265.73 ±0.195.15 ±0.332.39 ±0.23a4.90 ±0.13b4.08±0.21a，b(ng/ml）雌二醇25.65± 0.4424.84± 0.5725.56± 0.9024.84 ±0.3829.42 ±0.83a26.03 ±0.75b26.24 ±0.83b(ng/ml）T/E2比值0.19±0.0070.18±0.0060.20±0.0060.18 0.005±0.0050.10 ±0.004a0.18 ±0.003b0.16± 0.005a，b瘦素18.88± 0.8317.45± 0.4316.95± 0.6918.71 ±0.5931.42 ±0.73a23.06 ±0.61b26.16±1.59a，b(ng/ml）泌乳素15.00± 0.2215.04± 0.2014.14± 0.3515.67 ±0.7226.53 ±1.96a18.64 ±0.69b19.63±0.61a，b(ng/ml）TL（mg/dl）501.16 ±6.35517.85 ±4.30473.13 ±8.67477.74 ±9.19762.52 ±9.49a529.22 ±10.87b527.52 ±16.03bTC（mg/dl）93.75± 1.4892.48± 1.8888.19± 0.9690.46 ±1.17125.49 ±2.39a97.89 ±1.50b101.48±1.33a，bTG（mg/dl）113.98 ±1.48114.73 ±1.87110.35 ±1.51112.45 ±2.68154.11 ±4.75a119.45 ±3.36b121.37 ±2.30bPL（mg/dl）16.08± 0.4316.16± 0.5214.38± 0.6814.01 ±0.9721.67 ±0.67a16.48 ±0.39b16.21 ±0.13b睾丸TL（mg/g）209.98 ±2.74207.08 ±1.76208.29 ±1.47210.33 ±1.11331.48 ±13.8a232.59 ±4.36b248.87±2.22a，bTC（mg/g）24.40± 0.5624.16± 0.8121.45± 0.4321.03 ±0.8740.61 ±1.57a25.51 ±0.68b25.48 ±0.84bTG（mg/g）39.07± 1.7537.79± 1.8736.26± 1.8138.31 ±1.4065.79 ±1.29a44.08 ±1.52b50.09±1.45a，bPL（mg/g）9.95 ±0.399.90 ±0.238.64 ±0.398.88 24小时16.69 ±1.04a11.20 ±0.40b11.29 ±0.40b数值为平均值±SE（n1/4 6）。 带有上标的值通过ANOVA在p <0.05处显著不同。A：与对照组比较。b：与HFD组比较（HFD马郁兰）和（HFD鼠尾草）表3e对照组和不同处理组中的睾丸酶（芳香化酶、3b-HSD、ALP和ACP）活性参数控制向日葵Marjoram动物组Sage HFDHFD马郁兰公司简介Sage芳香酶（ng/g）5.70 ±0.364.29 ±0.465.79 ±0.655.11 ±0.599.71 ±0.54a7.45 ±0.23b6.66 ±0.21b3b-HSD（U/mg）0.42 ±0.030.40 ±0.040.46 ±0.040.44 0.06±0.060.17 ±0.03a0.37 ±0.01b0.34 ±0.02bALP（U/g）38.04± 1.9139.32± 2.7638.74± 1.5038.49 ±1.1321.14 ±1.49a33.20 ±1.79b30.56 ±0.47bACP（U/g）2.79 ±0.112.10 ±0.083.28 ±0.212.79 0.19±0.191.59 ±0.33a2.62 ±0.03b2.40 ±0.10b数值为平均值±SE（n1/4 6）。 带有上标的值通过ANOVA在p <0.05处显著不同。A：与对照组比较。b：与HFD组比较（HFD马郁兰）和（HFD鼠尾草）（图 6）or sage（Fig. （7）与HFD组相比，油组睾丸生精小管（ST）明显恢复，生精细胞排列规则，精子数（SP）明显增加，尤以马约拉素HFD组为甚。4.讨论肥胖是一个主要的健康问题，在世界范围内日益普遍。一般来说，肥胖症的发生是由于以下因素的组合171例如，《生物多样性和生物多样性科学杂志》2（2015） 167E175平板1e显示对照组（H E）染色睾丸组织的显微照片（图1）。1），车辆（图。2），马郁兰（Fig.3），sage（Fig.4），HFD（Fig.5），HFD马郁兰（Fig.6）和HFD间距（图。7）。遗传、文化、环境和行为因素[35]。虽然肥胖症的病因复杂，特别是饮食因素，但高脂肪饮食（HFD）的消费增加构成了其发展的主要风险[36]。喂食HFD可通过发展正能量平衡促进体重增加，导致脂肪组织质量增加。早期的研究已经使用各种动物来证明人类的肥胖模型样病症。其中，饮食诱导肥胖的啮齿动物模型提供了与人类肥胖相关的最佳相似性[37]。在本研究中观察到类似的模式，其中喂食HFD的大鼠经历了显著的肥胖，其特征在于肥胖指数显著增加，与正常大鼠相比体重增加。在这方面，许多研究继续调查肥胖和男性不育症发病率上升之间的关系。来自不同人群研究的数据表明，男性肥胖与性腺功能减退症患病率之间存在潜在联系[2]。特别是，BMI增加的男性比正常体重的男性更容易不孕[38]。在人类和动物中，精子数量、形态和活力的测定仍然是评估男性不育症的主要临床工具。旨在测量肥胖男性精子参数的研究倾向于显示精液质量与BMI之间的负相关性[39]。作为支持，本研究证明了HFD喂养大鼠的精子计数显著减少，并进一步扩展到睾丸、附睾、精囊和输精管的重量没有差异，表明肥胖对性器官的重量没有影响。后者证实了其他数据，表明在不同的饮食诱导肥胖动物模型中睾丸和其他性器官的平均重量没有变化[40]。在这种情况下，其他研究表明，肥胖倾向于通过破坏睾丸的组织结构影响男性生殖潜力[41]。本研究的结果证实了这一点，如曲细精管的退行性变化、脱落、空泡和生精细胞减少所证明的，支持肥胖与精子发生受损之间的关系。虽然已经提出了肥胖对男性生育能力影响的几种机制，但大多数研究都集中在激素谱的改变作为主要原因。在这些改变中，肥胖被认为通过芳香化增加睾酮（T）转化为雌激素（E2），随后降低T水平[42]。T的芳构化是E2合成的关键步骤，并由芳香酶催化[43]。芳香化酶是细胞色素P450超家族的成员，主要存在于性腺和脂肪组织中[44]。注意到肥胖男性中E2水平的增加是由于脂肪组织过量导致芳香化酶可用性高而导致T转化增加[45]。因此，发现芳香化酶活性升高与E2增加以及T和T/E2比值下降之间存在相关性，这尤其是导致肥胖男性不育的原因，如本研究和其他研究中显著证明的那样[39]。肥胖男性E2产生增加通过E2受体对LH分泌产生负反馈作用172埃及生物多样性和应用科学杂志2（2015）167E175(ER-a和eb）作用于下丘脑e垂体单位[46]，从而抑制下丘脑垂体睾丸（HPT）轴，并导致血清DHEA减少，这对产生雄性雄激素很重要[47]。因此，目前DHEA的下降可能与目前肥胖模型中观察到的T水平降低有关。T的降低也可能证实肥胖患者的PRL水平较高[39]。催乳素是哺乳动物脑垂体分泌的一种激素。它是控制牛奶生产的关键激素，但除了泌乳，PRL还密切参与几种生理活动，如生殖[48]。PRL的合成和释放由多巴胺能抑制机制控制，然而，肥胖男性可能存在多巴胺能系统改变，PRL分泌增加[49]。正常血清浓度的PRL已被证明对男性生殖道发挥许可作用，然而，过高的PRL浓度可能通过干扰FSH和LH的产生而与性腺功能减退、阳痿和不育相关[50]，这反过来又会影响睾丸功能，减少T释放[50]。与此一致，本研究显示诱导肥胖后PRL水平升高，这反过来可能表明高催乳素血症是导致肥胖相关男性不育的内分泌改变的一部分。另外的机制可能来自肥胖条件下瘦素的产生增加。瘦素是一种由脂肪细胞合成和分泌的蛋白质激素。其生理作用是调节食欲和体重，但由于肥胖受试者中脂肪组织过多，瘦素水平通常升高，导致不良影响，特别是对男性生育力[51]。这些效应中最重要的是，瘦素水平的增加可能通过睾丸Leydig细胞上的膜受体作为T合成的抑制信号[52]。瘦素受体也存在于精子的质膜上，这表明瘦素可能直接影响精子的产生，而不依赖于睾酮产生的变化[53]。尽管瘦素在睾丸中起作用，但其他研究表明瘦素与增加的体脂累积之间存在关系，体脂累积反过来可能影响T的产生。这可能与过量的瘦素水平可能导致脂肪组织中用于调节脂质代谢的瘦素信号传导受损因此，促进脂质沉积在身体组织中，导致BMI增加和肥胖[39]。BMI升高和脂肪积累可能导致T产生降低[4]，表明瘦素和血清T之间存在负相关[54]。因此，目前的研究结果，增加血清瘦素和脂质谱（TL，TC，TG，PLs）在血清和睾丸可能是相关的观察到的T水平的下降，在肥胖大鼠。除了内分泌紊乱的作用外，其他致病级联反应可能与促进肥胖男性的生育力有关。这可能通过关键类固醇生成酶（包括3b-HSD、ALP和ACP）的缺陷而发生。3b-HSD通过在线粒体中催化DHEA转化为雄烯二酮来控制T的生物合成反应，此后T的生物合成过程继续，同时移动到Leydig细胞中的内质网中[55]。碱性磷酸酶有助于离子运动穿过细胞膜，也与细胞的分泌和吸收过程有关。细胞[56]。ALP活性下降可能表明类固醇生成减少的状态，其中随着类固醇生成的代谢反应减慢，细胞间和细胞间转运减少[57]。ACP是一种能够在酸性介质中水解正磷酸酯的酶睾丸ACP基因受雄激素上调，受雌激素下调[58]。ACP的活性已被证明是上升时，睾丸类固醇生成增加。因此，ACP活性降低反映睾丸类固醇生成减少，这可能与促性腺激素分泌减少相关[57]。因此，ACP、ALP和3b-HSD睾丸活性降低的当前发现可能与在HFD喂养大鼠中观察到的睾酮产生受损密切相关。为了克服不育问题，经常尝试合成化合物或药物。除了这些化合物之外，传统药用植物或其提取物如今越来越多地用于预防或治疗肥胖及其相关的生殖障碍[59]。在这种情况下，人们对芳香植物给予了很大的关注，例如马郁兰和鼠尾草，因为它们的提取物中存在精油（EO）[60]。在本研究中，与肥胖大鼠相比，向HFD喂养的大鼠给予马郁兰或鼠尾草油提取物可有效防止体重增加和肥胖指数增加。还观察到血清和睾丸中脂质谱的改善，同时血清雄激素（T和DHEA）增加，E2、瘦素和PRL水平下降，从而表明生育力增强，附睾精子计数和睾丸结构正常化清楚地证明了这一点。虽然这些发现很有希望，但确切的机制仍不清楚，但它可能与本研究中使用的EO的活性成分有关。EO是挥发性物质和天然物质的混合物，其特征在于强烈的气味，由芳香植物作为次级代谢产物产生。EO的各种药理活性吸引了许多研究人员的兴趣，以研究其作为治疗各种疾病的药物的潜力[7]。这些油的不同药理活性与其活性成分有关，主要是萜类化合物[61]。萜类化合物是属于萜类化合物化学组的天然产物，萜类化合物是EO的主要成分草药或食用植物中含有的几种生物活性萜类化合物可以调节过氧化物酶体增殖物激活受体（PPARs）的活性[62]，PPARs是配体依赖性转录因子，属于核受体。在哺乳动物中，已鉴定出PPARs的三种亚型a、d和g，已知其在能量稳态和生殖功能中发挥多种重要作用[63]。PPARα在肝脏、心肌和消化道中高表达，并调节参与脂质代谢的靶基因的表达。PPARa的激活剂具有降低循环脂质水平的潜力，通常用于治疗高脂血症和其他血脂异常状态[64]。PPARd在包括脂肪组织在内的许多组织中表达，并且已证明PPARd活化可减轻肥胖和2型糖尿病[65]。马郁兰油提取物是萜类化合物的丰富来源，如百里酚、香芹酚[66]、萜品烯-4-醇、α-萜品烯和g-萜品烯[67]。其中单萜香芹酚被认为是PPARa和g的激活剂。这种影响可能173例如，《生物多样性和生物多样性科学杂志》2（2015） 167E175与以下观察结果相关：与喂食HFD的小鼠相比，喂食HFD的小鼠补充香芹酚倾向于降低体重增加、内脏脂肪和血浆脂质，这可能是通过调节脂肪组织基因表达和与导致脂肪发生的信号级联相关的蛋白质[68]。类似地，发现鼠尾草的油提取物含有不同的萜类化合物，例如12- 0-甲基鼠尾草酸、20-羟基铁芸香醇、绿花醇、油酸和α-亚麻酸。特别地，甲基鼠尾草酸和α-亚麻酸能够显著激活PPARg，其似乎有效调节涉及能量消耗以及脂质和葡萄糖代谢的基因[69]。因此，可以表明，通过本文提供的马郁兰和鼠尾草油改善的肥胖状态和相关的过度肥胖主要依赖于通过在这些油中大量存在的萜类成分对PPARa和PPARg鉴于上述数据，在本研究中，似乎有可能建立马郁兰和鼠尾草EO减少肥胖和高血压状态与提高生育力之间的联系。显然，肥胖状态下总身体脂肪的增加与T和精子数量的低水平有关[6]。相比之下，通过自然方法（饮食和/或运动）减肥的肥胖男性T水平大幅增加，血清瘦素浓度降低[4]。一项类似的研究还表明，接受胃旁路手术并随后体重减轻的肥胖患者表现出T增加和E2水平降低[70]，这可能是由于脂肪组织中高度表达的芳香酶活性降低，并且是E2产生的关键调节剂[71]。因此，它可以表明，通过马郁兰和鼠尾草ESo减少肥胖可能特别影响脂肪组织特异性激素，其在调节T生物合成和男性生育力中具有相关作用。总之，本数据最终证明了HFDe诱导的肥胖与睾丸功能和结构受损的发展之间的关系。改变的激素谱，包括雄激素，E2，瘦素和PRL可以解释这种关系。马郁兰和鼠尾草油提取物的给药对改变的激素具有显著的预防活性，同时改善了睾丸状态。 因此，表明每种油提取物预防男性不育症的最高能力，特别是与肥胖有关的。确认作者感谢曼苏拉大学理学院动物学系为开展这项工作提供了必要的设施雷弗伦 CES[1] Mayes JS，Watson GH.性类固醇激素对脂肪组织和肥胖的直接影响。Obes Rev2004;5：197e 216.[2] Ferris WF，Crowther NJ.脂肪曾经是脂肪，那就是：我们对脂肪组织的看法不断变化。J.A.2011;22：147e 54.[3] 杨伟华，李晓华. 男性肥胖和年龄与精液参数和精子染色质完整性的关系。91.第91章：你是谁？[4] ChavarroJE，Toth TL，Wright DL，Meeker 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